電泳是電解質中的帶電粒子在電場的作用下以不同的速度向相反的電荷方向遷移的現象。傳統電泳儀最大的局限性是難以克服兩端高電壓引起的介電離子流的焦耳熱，造成粘度和速度梯度，導致帶寬，降低分離效率，極大地限制了高電壓的使用。毛細血管電泳儀以毛細管為分離通道，以高壓DC電場為驅動力，利用樣品各組分的遷移率差異和分布系數差異進行分離，是繼高效液相色譜之后分析科學的又一大進步。
毛細血管電泳儀的分離過程是在緩沖溶液中進行的，緩沖溶液的選擇直接影響粒子的遷移和分離。緩沖溶液的選擇要求在選定的酸堿度范圍內具有很強的緩沖能力，在檢測波長下具有低紫外吸收和低電泳遷移率。
磷酸鹽緩沖體系可以作為選擇依據，可以初步確定pH范圍，進而進一步選擇更好的pH和緩沖試劑。磷酸鹽是毛細管電泳中常用的緩沖體系之一，紫外吸收低，pH緩沖范圍寬(pH=1.5 ~ 13)，但電導率高。
實驗表明，對于蛋白質、肽、氨基酸等兩性樣品，采用酸性(pH=2)或堿性(pH>9)的分離條件更容易獲得良好的分離結果。糖樣通常在pH=9~11時可以分離。對于羧酸或其他樣品，通常選擇p h=5 ~ 9時的分離條件。
酸堿度的選擇也與使用的毛細管種類有關。很多鍍膜毛細管只能在一定的pH范圍內工作。如聚丙烯酰胺涂層毛細管在3<pH<8范圍外工作，其涂層容易水解失效。
在相同的pH下，不同緩沖體系的分離效果不盡相同，有些可能差別很大。一般的經驗是，能與樣品相互作用的試劑可能是常用試劑。例如，當分離糖類和DNA分子時，硼酸鹽緩沖溶液系統是優選的。由于硼酸鹽能與糖的羥基形成配位鍵，增加了糖的負電荷和分離度。硼酸鹽緩沖溶液體系也適用于分離其他含鄰羥基或多羥基的化合物。
緩沖試劑和pH調節劑的濃度也需要優化。緩沖試劑的濃度一般控制在10~200 mmol/L，高電導率的緩沖試劑如磷酸鹽的濃度可以控制在20mol/L左右，而低電導率的試劑如硼酸鹽、HEPES的濃度可以控制在100 mmol/L以上，有時為了抑制蛋白質的吸附，可以使用較高的試劑濃度(>0.5 mol/L)，要注意降低分離電壓。
更新時間：2021-06-23
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